腹腔注射（Intraperitoneal Injection, IP）是小鼠实验中常见的给药方式，适用于药物、细胞悬液或试剂递送。然而，操作不当可能导致注射失败、组织损伤甚至小鼠死亡。本文瀚江生物将详细介绍小鼠腹腔注射的实验要点，帮助大家规范操作，提高实验成功率~
一、为什么选择腹腔注射？
吸收快：腹腔内血管丰富，药物可快速吸收进入血液循环。
操作简便：相比静脉注射（IV）或尾静脉注射，IP技术要求较低。
适用性广：适合大体积（5-10 mL/kg）或刺激性较小的药物。
局限性： 不适合强酸、强碱或高渗溶液（可能引发腹膜炎）。 吸收速度略慢于静脉注射。
二、实验前的准备工作
1. 器材准备
注射器：1 mL 或更小（精确控制剂量）
针头：25-27G（细针减少损伤），长度约1.5 cm（避免刺入过深）
消毒用品：75%酒精棉球或碘伏
小鼠：提前适应环境，避免应激；如需空腹，可禁食4-6小时（减少胃肠内容物）
2. 药物配制 确保无菌、无颗粒（可过滤）。
注射体积：5-10 mL/kg 体重（如20 g小鼠注射0.1-0.2 mL）。 刺激性药物需调整pH或稀释，避免腹腔刺激。
三、腹腔注射操作步骤
1. 小鼠固定
手法：左手拇指和食指捏住小鼠颈背部皮肤，小指或无名指固定尾部，使其腹部朝上，头部略向下倾斜（使肠道自然上移，减少刺伤风险）。
注意：若小鼠挣扎剧烈，可用布巾包裹或短暂麻醉（如异氟烷）。
2. 注射定位
最佳进针区域：小鼠下腹部 左下或右下1/3处（避开中线血管和膀胱）。
❌ 避免中线（易刺伤血管或膀胱）。
❌ 避免右上腹（靠近肝脏）。
3. 注射操作
消毒：酒精棉球擦拭注射部位。
进针： 针头以 30-45°角 刺入皮肤，进入腹腔时有明显“落空感”（约3-5 mm深）。
回抽：确认无血液、尿液或肠内容物（如有，需更换位置）。
推注：缓慢注射（0.1 mL/秒），避免压力过大。
拔针：快速拔出，轻压片刻防止渗漏。
四、常见问题及解决方案
1. 药物漏出
原因：针头未完全进入腹腔或拔针过快。
解决：重新消毒，更换注射部位。
2. 注射后小鼠死亡
可能原因： 误入血管（回抽未检查）。 刺伤内脏（如肠道、肝脏）。 药物毒性或剂量错误。
3. 腹膜炎或炎症反应
预防： 确保药物无菌、无刺激性。 避免重复同一部位注射（间隔48小时以上）。
五、实验小技巧
🔹 新手练习：可先用生理盐水或染色液练习，观察注射后腹腔分布情况。
🔹 标记注射位点：避免同一小鼠短期内重复注射同一区域。
🔹 术后观察：检查小鼠是否出现疼痛（弓背、活动减少）、腹胀或异常行为。
六、伦理与规范
操作需符合动物实验伦理，减少小鼠痛苦。
如实验需多次注射，应评估小鼠状态，必要时使用镇痛措施。
总结 小鼠腹腔注射是基础但关键的实验技术，掌握正确的进针位置、角度和注射手法可大幅提高成功率。
建议新手先在麻醉小鼠或模型上练习，熟练后再进行正式实验。
